1. 系統認知：GST-Tag與谷胱甘肽樹脂的鎖鑰關系

谷胱甘肽S轉移酶標簽（GST-Tag，26 kDa）與谷胱甘肽樹脂的親和力源于天然底物-酶相互作用：還原型谷胱甘肽（GSH）通過硫原子與GST的疏水口袋形成氫鍵網絡，解離常數（Kd）低至10?? M。這種高特異性使得一步純化即可達到>90%純度，但前提是樹脂配基密度≥8 μmol GSH/mL凝膠，且載體為6%交聯瓊脂糖（如BMR2010），確保流速60 cm/h下背壓<0.3 MPa。

2. 柱層析前準備：樣本與緩沖液的隱形陷阱

• 裂解緩沖液：1% Triton X-100替代NP-40，避免A280背景升高；加入1 mM PMSF須在裂解后10 min內使用，否則半衰期縮短至30 min。

• 預處理：離心速度選擇12,000×g×15 min，去除不溶物；上樣前用0.45 μm過濾，防止樹脂微球堵塞。

• 谷胱甘肽樹脂平衡：5倍柱體積（CV）的PBS（pH 7.4）沖洗，電導率與樣本差異<5%，避免“鹽析"導致非特異吸附。

3. 上樣與洗脫：流速控制的毫米級誤差

• 動態載量測試：將1 mg GST-GFP融合蛋白（分子量54 kDa）以0.5 mL/min加載至1 mL BMR2010柱，穿透10%時計算載量，實測值≥8 mg/mL（理論值10 mg/mL），差異源于標簽折疊效率。

• 分段洗脫：5 mM GSH預洗脫去除弱結合蛋白，10 mM GSH洗脫目標蛋白，收集2 CV后切換至20 mM GSH確保全回收，避免“拖尾"導致稀釋。

4. 樹脂再生與存儲：化學穩定性臨界點

• 再生方案：3倍CV的6 M鹽酸胍去除頑固吸附蛋白，隨后用3倍CV的70%乙醇消毒，最后用10倍CV的PBS平衡至中性。鹽酸胍處理次數≤20次，否則配基泄漏率從0.2%升至1.5%。

• 存儲條件：20%乙醇中4℃保存，每3個月檢測GSH配基密度（Ellman法），下降>15%需更換樹脂。

5. 故障診斷：從壓力異常到蛋白丟失

• 高背壓：檢查樣本黏度（≥5 cP時稀釋2倍），或篩板堵塞（反向沖洗0.1 M NaOH）。

• 低回收率：標簽未暴露（加入0.1% SDS溫和變性），或GSH氧化（DTT終濃度1 mM還原）。

• 雜帶污染：洗脫前用5倍CV的150 mM NaCl預洗，去除離子相互作用蛋白；若雜帶為GST二聚體，在裂解緩沖液中加入1 mM EDTA抑制金屬酶。

6. 升級方案：從批次到連續流工藝

將BMR2010裝入XK 16/20柱（柱高10 cm），連接?KTA系統，設置梯度洗脫（5-20 mM GSH，10 CV），結合Superdex 200 Increase在線脫鹽，實現從菌體裂解到無標簽蛋白僅需2.5 h，回收率提升至85%。